Qubit Systems

Q-Box – System do pomiaru oddychania o niskiej intensywności

Kod RP1LP

Zestaw Q-Box RP1LP - system do pomiaru oddychania o niskiej intensywności – służy do badania tempa metabolizmu poprzez wymianę gazową (CO2 i O2) u małych zwierząt, takich jak owady, gady, płazy, bezkręgowce oraz małe ssaki. System automatycznie oblicza przepływ gazów VO2 i VCO2, a dane są wyświetlane bezpośrednio w oprogramowaniu. Pakiet Q-Box RP1LP może być również używany do pomiaru wymiany gazowej CO2 i O2 w Wraz z systemem do analizy przełączania gazów (Qubit Gas Switching System) możliwy jest­ pomiar tempa oddychania (VO2, VCO2) oraz obliczenie współczynnika oddychania (RQ = ilość wydzielanego CO₂ / ilość pobieranego O₂). Ten automatyczny system 8-kanałowy jest przeznaczony do analizy maksymalnie 7 zwierząt jednocześnie + 1 referencja.

Dowiedz się więcej o podstawach respirometrii odwiedzając blog QUBIT.

Dowiedz się więcej
Cechy

Pomiary oddychania w otwartym przepływie są stosowane w przypadku większych lub bardziej aktywnych zwierząt, natomiast do pomiarów bardzo małych zmian stężenia pO2, na przykład podczas oddychania małych owadów, system może być używany w konfiguracji z tzw. przepływem zatrzymanym. W tym drugim przypadku przepływ jest zatrzymywany na pewien czas, aby umożliwić akumulację CO2 i spadek stężenia O2. Po ponownym otwarciu przepływu, gaz jest przepuszczany przez czujniki w celu wykonania pomiarów. Otwieranie i zatrzymywanie przepływu gazów przez komorę, w której znajduje się zwierzę, odbywa się automatycznie w oprogramowaniu określonych przez użytkownika przedziałach czasowych.

Inne potencjalne zastosowania tego zestawu obejmują pomiary metabolizmu w przestrzeni gazowej nad zawiesinami wodnymi, np. pomiar procesu fermentacji u drożdży.

Q-Box RP1LP może być stosowany do pomiaru zużycia O2 i produkcji CO2 praktycznie w każdym układzie biologicznym, w którym zmiany pCO2 i pO2 mieszczą się w zakresach mierzonych przez

Zestaw Q-Box RP1LP do pomiaru oddychania o niskiej intensywności jest modułowy, dlatego jego komponenty można w łatwy sposób wymieniać, aby dopasować je do innych zastosowań, takich jak procesy oddychowe gleby czy fotosynteza u roślin. Aby móc wykonać pomiary oddychania u większych i bardziej aktywnych zwierząt, takich jak ssaki, zachęcamy do zapoznania się z zestawem Q-Box RP2LP do pomiaru oddychania o wysokiej intensywności.

Właściwości:

  • Modułowy system do pomiaru wymiany gazowej dla zwierząt o wysokim metabolizmie
  • Zawiera analizatory CO2 i O2
  • Komponenty wymienne z innymi zestawami Q-Box
  • Automatyczne obliczanie VCO2 i VO2
  • System umieszczony w wytrzymałej obudowie dla łatwego transportu i montażu
  • Do użytku zarówno w laboratorium jak i w terenie (z opcjonalnym akumulatorem)

Zastosowanie:

  • Respirometria owadów
  • Respirometria małych zwierząt
  • Pomiary fermentacji (pomiary metabolizmu w przestrzeni gazowej nad zawiesinami wodnymi)
  • Oddychanie wodne (pomiary gazów rozpuszczonych w wodzie)
  • Monitoring atmosfery
  • Oddychanie w próbkach glebowych
  • Oddychanie drobnoustrojów

Oprogramowanie Q-Box RP1LP

8-mealworms-data-Q-Box-RP1LP-1024x539.png

Przykładowe dane z procesu metabolizmu 8 insektów

open-flow-calculations-Q-Box-RP1LP-1024x543.png

Przykładowe dane obliczone w układzie z przepływem otwartym

stop-flow-data-Q-Box-RP1LP-1024x532.png

Przykładowe dane obliczone w układzie z przepływem zamkniętym

Komponenty
Standardowe komponenty produktu
  • Q-P103 Pompa gazowa w standardowym zestawie (1 l/min bez obciążenia)
  • Q-P651 Pompa gazowa w połączeniu z systemem przełączania gazu (3 l/min bez obciążenia)
  • G117 Komora przepływowa o zmiennej objętości (śr. wew. 1,9 cm i maks. długość 4 lub 10 cm)
  • G115 Komora przepływowa (śr. wew. 3,8 cm i długość 20 cm lub długość określona przez użytkownika)
  • Dostępne są również komory o niestandardowych wymiarach (opcjonalnie)
  • G122 Duże zbiorniki gazowe (2 x 30 l)
  • Q-G266 Monitoring przepływu (1 l/min)
  • Q-S102 Analizator O2 (0-25%) (zawiera kolumnę osuszającą)
  • S174 Sonda temperaturowa (kompatybilna z pokrywą komory)
  • Q-S151 Analizator CO2 (0-2000 ppm) (zawiera kolumny płuczące CO2 i H2O)
  • A383 Cyfrowy elektrozawór jednostki sterującej (DCU) (przekierowuje przepływ gazu z referencji do komory testowanej)
  • C610 dwa zintegrowane interfejsy danych LabQuest Mini (6 portów analogowych, 4 cyfrowe)
  • C901 Oprogramowanie Logger Pro
  • C404 Dostosowane pliki konfiguracji eksperymentalnej do pomiarów i obliczeń przepływu otwartego oraz zamkniętego, instrukcje obsługi programu Logger Pro
  • Zestaw akcesoriów Q-Box przewody, złącza, filtry, klucz, śrubokręt, przewód do kąpieli kondensacyjnej
  • Wytrzymała, odporna na warunki atmosferyczne obudowa mieszcząca wszystkie analizatory i czujniki wraz z zasilaczem
  • Osobne zasilacze do samodzielnego użytkowania analizatorów i czujników
Rozszerz produkt o dodatki
Publikacje

Rommelaere S et al. (2024) A humoral stress response protects Drosophila tissues from antimicrobial peptides. Current Biology 34: 1426

Filho BLC et al. (2023) Mortality, metabolic rate and oviposition of Gryllus (Gryllus) assimilis (Fabricius, 1775) (Orthoptera: Grylliadae) females under constant and fluctuation warm temperatures.  Journal of Thermal Biology 114: 103574

Nesvorna M. et al. (2021) Microbiome variation during culture growth of the European house mite, Dermatophagoides pteronyssinus.  FEMS Microbiology Ecology, 97 

Filho BLC et al. (2021) Impact of warmer fluctuating temperatures on the Jamaican field cricket, Gryllus assimilis (Fabricius, 1775) (Orthoptera: Gryllidae). Journal of Thermal Biology. Available online 25 December 2021, 103145

Vincent CM, Dionnea MS, (2021) Disparate regulation of IMD signaling drives sex differences in infection pathology in Drosophila melanogaster PNAS 2021 Vol. 118 No. 32.

Hall JM, Warner DA (2020) Thermal Sensitivity of lizard embryos indicates a mismatch between oxygen supply and demand at near-lethal temperatures. JES-A Ecological and Integrative Physiology

Kierdof K et al (2020) Muscle function and homeostasis require cytokine inhibition of AKT activity in Drosophila. eLife, 9: e51595 DOI:

Walker MJ et al (2020) The influence of meal size on the digestive energetics of Gould’s wattled bat, Chalinolobus gouldii.  Australian Journal of Zoology

Ramos-Perez VI et al (2020) Sex-related interannual plasticity in wing morphological design in Heliconius charithonia enhances flight metabolic performance. PLOS ONE

Villa-Bedoya S et al (2020) Heat shock proteins and antioxidants as mechanisms of response to ivermectin in the dung beetle Euoniticellus intermedius Chemosphere

Lin CC et al. (2018) A cleavage product of Polycystin-1 is a mitochondrial matrix protein that affects mitochondria morphology and function when heterologously expressed.  Scientific Reports 8:2743 DOI:10.1038/s41598-018-20856-6

Luo K et al (2018) High Voltage Electrostatic field-induced Oxidative stress: characterization of the physiological effects ins Sitobion Avenae (hemiptera: Aphiodidae) across multiple generations. Bioelectromagnetics DOI: 10.1002/bem.22157

Han W et al. (2017) Acute toxicity and sublethal effects of myclobutanil on respiration, flight and detoxification enzymes in Apis cerana cerana.  Pesticide Biochemistry and Physiology 147: 133-138

Chen Z et al (2014) Genetic mosaic analysis of deleterious mitochondrial DNA mutation in Drosophila reveals novel aspects of mitochondrial regulation and function. Molecular biology of the Cell 26: 674-684 

Carver S, Bell BD, Waldman B (2010) Does Chytridiomycosis disrupts amphibian skin function? Copeia 3: 487-495