Qubit Systems

Zestaw do analizy respirometrii organizmów wodnych

Kod Q-Box AQUA

Zestaw Q-Box AQUA został zaprojektowany do pomiaru tempa metabolizmu (VO2) jako redukcji tlenu rozpuszczonego w komorze respirometrycznej z udziałem zwierząt wodnych. Przy pomocy tego systemu można badać zarówno kręgowce jak i bezkręgowce. Q-Box AQUA wykorzystuje zasadę respirometrii przepływowej. W jednym eksperymencie można monitorować do 4 komór, czyli do 4 próbek wodnych (przy użyciu odpowiednich komponentów). We wszystkich komorach panują takie same warunki eksperymentalne.

Dowiedz się więcej
Cechy
  • Optyczna sonda tlenu
  • Mała komora respirometryczna (140 ml, śr. wew. 3,8 cm, dł. 15,3 cm)
  • Duża komora respirometryczna (660 ml, śr. wew. 8,2 cm, dł. 16,7 cm)
  • Komora mini-AQUA (9 ml, śr. wew. 1,6 cm, dł. 4,5 cm)
  • Mikrokomora (1,23 ml, śr. wew. 1,5 cm, gł. 0,85 cm)
  • Sonda temperatury i zasolenia do kąpieli wodnej
  • Pompa cieczy (1 l/min lub 0,1 l/min w mini-AQUA) i potrójny zawór
  • Cyfrowa jednostka sterująca zaworem
  • 6-kanałowy interfejs danych
  • Oprogramowanie do zapisywania danych
  • Czujnik ciśnienia bezwzględnego
  • Wytrzymała, odporna na warunki atmosferyczne obudowa

Zastosowanie:

  • Badania respirometryczne w środowisku wodnym
  • Badania kręgowców i bezkręgowców wodnych
  • Badania laboratoryjne i terenowe (z opcjonalną baterią)

Zasada działania systemu Q-Box AQUA

Zwierzę umieszcza się w komorze respirometrycznej, a następnie mierzy się spadek stężenia rozpuszczonego O2 spowodowany jego zużyciem. Dane dotyczące stężenia rozpuszczonego tlenu, skorygowane o zasolenie wody, temperaturę i ciśnienie, są wyświetlane w oprogramowaniu i wykorzystywane do obliczania bieżących wartości wskaźnika zużycia tlenu (VO2). Pomiary są wykonywane sekwencyjnie, bez wyjmowania zwierzęcia z komory. Komora jest przepłukiwana świeżą wodą pomiędzy pomiarami. Te przerywane pomiary przepływu VO2 eliminują wady ciągłej, zamkniętej respirometrii, w której poziom rozpuszczonego O2 w komorze może spaść do poziomu hipoksyjnego. Wszystkie elementy zestawu Q-Box AQUA są umieszczone w wytrzymałej, odpornej na warunki atmosferyczne obudowie, co ułatwia jego transport i przechowywanie.

Podczas eksperymentu woda krąży za pomocą pompy cieczy w komorze zwierzęcia i w naczyniu przepływowym z optyczną sondą tlenu. Główny zawór jest sterowany przez cyfrową jednostkę sterującą (DCU) oraz oprogramowanie, które definiuje czy system ma pracować w trybie cyrkulacji czy płukania. W trybie cyrkulacji wykonywane są pomiary oddychania, a w trybie płukania komora zwierzęca jest płukana wodą natlenioną z łaźni wodnej. Cykl cyrkulacji i płukania powtarzany jest aż do zakończenia eksperymentu. Czas płukania i fazy cyrkulacji wybierany jest przez użytkownika w oprogramowaniu.

 

Wersja mini-AQUA dla małych próbek

Do pomiarów respirometrii wodnej małych ryb i owadów (~1 g) Qubit oferuje zestaw mini-AQUA, który jest zmodyfikowaną wersję Q-Box AQUA. Mini-Aqua wyposażony jest w małą komorę wodną (9 ml) i komponenty do pomiaru mniejszej objętości całkowitej. Zestaw mini-AQUA zawiera również mikrokomorę (o objętości 1,23 ml) wraz z sondą do analizy rozpuszczonego tlenu. Wersja ta służy do pomiaru VO2 bardzo małych próbek, takich jak larwy i młode ryby o masie poniżej 0,5 g. Mikrokomora jest używana w trybie przerywanego przepływu, co zapewnia wyższą czułość pomiaru.

microchamber-with-DO-probe-a.jpg

G223 mikro-komora systemu mini-AQUA

 

Oprogramowanie Q-Box AQUA

gold-fish-data-1024x536.png
Calculation-page-2-1024x567.jpg
Komponenty
Standardowe komponenty produktu
  • G217 Duża komora oddechowa (śr. wew. 8,2 cm, dł. 16,7 cm, 660 ml)
  • G216 Mała komora oddechowa (śr. wew. 3,8 cm, dł. 15,3 cm, 140 ml)
  • G210 Komora mini-AQUA (śr. wew. 1,6 cm, dł. 4,5 cm, 9 ml)
  • G223 Mikrokomora do mini-AQUA (śr. wew. 1,5 cm, gł. 0,85 cm, 1,23 ml)
  • S122 Sonda optyczna do pomiaru tlenu
  • A260 Naczynie przepływowe do sondy tlenu
  • PL175 Pompa cieczy (1 l/min)
  • PL100 Pompa cieczy (0,1 l/min) do mini-AQUA
  • A236 Potrójny zawór
  • C200 Cyfrowy moduł sterujący do zaworu potrójnego
  • A750 Prosta plastikowa łaźnia wodna
  • S132 Sonda temperaturowa do łaźni wodnej
  • S181 Czujnik ciśnienia
  • S130 Sonda zasolenia wody
  • C610 6-kanałowy interfejs do zapisywania danych (x 2)
  • C901 Oprogramowanie i C404 plik eksperymentalny
  • Wytrzymała, odporna na warunki atmosferyczne obudowa
  • Zestaw akcesoriów Q-Box AQUA przewody, złącza, filtry
  • Instrukcja obsługi
Rozszerz produkt o dodatki
  • A249 zestaw baterii
Publikacje

M Aliende-Hernandez et al. (2024) Metabolic response of the starfish Coscinasterias Tenuispina (Lamarck, 1816) to ocean warming. Cah. Biol. Mar 65: 334-341

K Osterheld et al. (2023) Triploidy in Mytilus edulis impacts the mechanical properties of byssal threads. Aquaculture 566

SS Fontaine, PM Mineo & KD Kohl (2022) Experimental manipulation of microbiota reduces host thermal tolerance and fitness under heat stress in a vertebrate ectotherm. Nature Ecology & Evolution 6, 405-417

D H Hudson (2021) Metabolic response to temperature stress in the Colombian freshwater crab Neostrengeria macropa (H. Milne Edwards, 1853) (Decapoda: Brachyura: Pseudothelphusidae). Journal of Crustacean Biology, Feb 2021, 1-7 doi:10.1093/jcbiol/ruab002

Rahi L. (2021)Temperature induced changes in physiological traits and expression of selected candidate genes in black tiger shrimp (Penaeus monodon) larvae. Aquaculture Reports 19

Rahi L et al. (2020) Impact of salinity changes on growth, oxygen consumption and expression pattern of selected candidate genes in the orange mud crab (Scylla Olivacea). Aquaculture Research 51: 4290-4301

Lucey NM, Collins M, Collin R (2020) Oxygen-mediated plasticity confers hypoxia tolerance in a corallivorous polychaete. Ecology and Evolution 10: 1145-1157

Huang M et al. (2020) The Influence of Atrazine on the Growth, Development and Oxygen Consumption of Pelophylax nigromaculatus Tadpoles. Nature Environment and Pollution Technology 19: 1311-1317

Lamarre SG et al. (2019) Interrelationship between contractility, protein synthesis, and metabolism in mantle of juvenile Cuttlefish (Sepia officinalis). Frontiers in Physiology 10: 1051 doi: 10.3389/fphys.2019.01051

Rangel RE, Johnson DW. (2018) Metabolic responses to temperature in a sedentary reef fish, the bluebanded goby (Lythrypnus dalli, Gilbert) Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 501 Pages 83-89

Black MN et al. (2017) Environmentally relevant concentrations of amine-functionalized copper nanoparticles exhibit different mechanisms of bioactivity in Fundulus Heteroclitus in fresh and brackish water. Nanotoxicology 11: 1070-1085

Keogh CL et al (2017) The double edge to parasite escape: invasive host is less infected but more infectable Ecology, 98(9) 2241–2247

Callaghan NI. Et al (2016) Zinc oxide nanoparticles trigger cardiorespiratory stress and reduce aerobic scope in the white sucker, Catostomus commersonii NanoImpact 2: 29–37

Lamarre SG. et al. (2016) Metabolic rate and rates of protein turnover in food deprived cuttlefish, Sepia Officinalis (Linnaeus1 1758). Am J Physiol Regul Intregr Comp Physiol 310: R1160-R1168

Bessemer RA. Et al. (2015) Cardiorespiratory toxicity of environmentally relevant zinc oxide nanoparticles in the freshwater fish Catostomus commersonii Nanotoxicology 9: 861-870SHAR