Qubit Systems

System do analizy stężenia CO2 u roślin

Kod Q-Box CO650

System do analizy stężenia CO2 u roślinach Q-Box CO650 został zaprojektowany do pomiaru procesu fotosyntezy, oddychania oraz transpiracji liści umieszczonych w komorze przepływowej. System do analizy CO2 u roślin można stosować zarówno w laboratorium jak i w badaniach terenowych (z opcjonalnym akumulatorem). Oprogramowanie Q-Box CO650 automatycznie sprawdza poziomy stężenia CO2 i pary wodnej oraz na bieżąco oblicza tempo fotosyntezy i transpiracji.

Dowiedz się więcej
Cechy

Właściwości systemu Q-Box do pomiaru oddychania o wysokiej intensywności:

  • Modułowy system do pomiaru gazów
  • Komora przepływowa do analizy liści
  • Komponenty wymienne z innymi zestawami Q-Box
  • Automatyczna analiza wymiany węgla i wody
  • System umieszczony w wytrzymałej obudowie dla łatwego transportu i montażu
  • Do użytku zarówno w laboratorium jak i w terenie (z opcjonalnym akumulatorem)

Zastosowanie:

  • Pomiary szybkości wymiany CO2 w procesie fotosyntezy
  • Pomiary szybkości transpiracji
  • Badania efektywności wykorzystywania wody
  • Pomiary szybkości oddychania roślin w ciemności
  • Badania liści, korzeni i całych roślin (z opcjonalnymi komorami)
  • Oddychanie próbek glebowych lub oddychanie małych zwierząt (z dodatkowymi komponentami)

Światło i temperatura

Źródło światła LED (A113) dostarcza do liścia promieniowanie fotosyntetycznie czynne, generując przy tym minimalne obciążenie cieplne. System LED może dostarczyć około 2000 µmol fotonów/m²/s przy maksymalnej mocy i jest dostarczane w formie skalibrowanej (w oprogramowaniu). Dzięki temu natężenie światła można precyzyjnie ustawić bez użycia światłomierza. Do obliczenia przewodności cieplnej liścia wymagane są pomiary temperatury liścia, które są uzyskiwane za pomocą termistora temperaturowego (S173) zamontowanego w dolnej części komory przepływowej (G112), w której umieszczane są liście. Sygnały analogowe ze wszystkich czujników są konwertowane na sygnały cyfrowe za pośrednictwem trzech zintegrowanych interfejsów LabQuest mini (9 kanałów). Dane są wyświetlane rejestrowane i przetwarzane na komputer PC lub Macintosh za pomocą oprogramowania Logger Pro. Każdy zestaw zawiera dostosowane pliki eksperymentalne do gromadzenia danych, automatycznych obliczeń i wszelkich dalszych analiz.

Fotosynteza i respiracja

System do pomiaru CO2 u roślin Q-Box CO650 wykorzystuje analizator gazu CO2 na podczerwień (Q-S151). Stężenie CO2 wchodzącego do komory, w której umieszczony jest liść oraz poziom wychodzącego z niej CO2 jest mierzone w różnych momentach za pomocą tego samego analizatora. Sterowanie odbywa się za pomocą zaworu elektromagnetycznego DCU, a przełączanie zaworu pomiędzy pomiarami referencyjnymi i testowanymi jest określane przez użytkownika. Gdy liść jest wystawiony na działanie światła, mierzona jest różnica pomiędzy stężeniami CO2 napływającego i wypływającego z komory, co w efekcie umożliwia automatyczne obliczenie fotosyntetycznego tempa wiązania CO2. Natomiast pomiary wymiany CO2 w ciemności dostarczają danych na temat oddychania roślin w warunkach ciemności.

Transpiracja

System Q-Box CO650 zawiera czujnik wilgotności i temperatury (Q-S161), który mierzy wilgotność względną powietrza przed i po przejściu przez komorę, w której umieszczony jest liść. Jednocześnie mierzona jest również temperatura na tym samym czujniku RH. Pomiary różnicy pomiędzy gazem napływającym i wypływającym, a także różnicą temperatury, natężenia przepływu gazu przez komorę są wykorzystywane do automatycznego obliczania intensywności transpiracji liści.

Q-Box-CO650-close-up-web.png
CO650-in-the-field-measurements-a.jpg

System Q-Box CO650 można stosować również w badaniach terenowych z opcjonalnym akumulatorem

Oprogramowanie Q-Box CO650

page-1-data-1024x545.png

Przykładowe dane robocze z analizy pomiaru liścia rośliny pająkowatej

page-2-data-1024x487.png

Automatyczna analiza fotosyntezy oraz transpiracji (strona 2 w oprogramowaniu)

Komponenty
Standardowe komponenty produktu
  • Q-A101 Stojak laboratoryjny (wolnostojący i/lub zintegrowany z systemem Q-Box)
  • A113 Źródło światła LED skalibrowane w oprogramowaniu
  • Q-G267 Monitoring przepływu, pompa gazowa x 2 (1 l/min bez obciążenia)
  • G112 Komora przepływowa do analizy liści
  • G122 Duże zbiorniki gazowe (2x)
  • Q-S151 Analizator CO2 (0-2000 ppm) (zawiera kolumny płuczące CO2 i H2O)
  • Q-S161 Czujnik wilgotności/temperatury
  • S173 Termistor temperaturowy
  • A383 Elektrozawór DCU do przełączania pomiędzy gazem referencyjnym, a próbką
  • S181 Czujnik ciśnienia bezwzględnego
  • C610 Trzy zintegrowane interfejsy danych LabQuest Mini (9 kanałów analogowych)
  • C901 Oprogramowanie Logger Pro
  • C404 Niestandardowe pliki konfiguracji eksperymentalnej do zbierania, wyświetlania i analizy danych
  • Zestaw akcesoriów Q-Box przewody, filtry, złącza
  • Wytrzymała, wodoodporna obudowa mieszcząca czujniki i analizatory
  • Instrukcja obsługi
  • Indywidualne zasilacze do samodzielnego użytkowania czujników i analizatorów
Rozszerz produkt o dodatki
  • A249-3 Akumulator litowo-jonowy (do użytku w terenie)
Publikacje

Iseas MS et al (2025) Influence of the microtopography of patagonian peatbogs on the fluxes of greenhouse gasses and dissolved carbon in porewater. Ecohydrology & Hydrobiology 25, 155-165,

Rudresh HS et al (2024) Comparative analysis of desiccation tolerance in Oesporangium elegans and Mickelopteris cordata. Vegetos 37: 1244-1256

Petrova S, Petkova M. (2023) Plant Traits of Tilia tomentosa Moench, Fraxinus excelsior L, and Pinus nigra J.F. Arnold as a proxy of urbaniazation.  Forests 14, 800

Oconor EF et al (2023) Growth and photosynthetic development of Swietenia mahagoni in svbstrates inoculated with arbuscular mycorrhizal fungi.  Bosque 44,

Marriboina S et al. (2020) Systematic hormone-metabolite network provides insights of high salinity tolerance in Pongamia pinnata (L.) pierre

Yathisha NS et al. (2020) Vegetative desiccation tolerance in Eragrostiella brachyphylla: biochemical and physiological responses. Heliyon 6, Cell Press Online

Sengupta D et al. (2019) Photosynthetic performance and sugar variations during key reproductive stages of soybean under potassium iodide-simulated terminal drought. Photosynthetica 57: 458-469

Jacotot, A et al. (2018) Effects of elevated atmospheric CO2 and increased tidal flooding on leaf gas-exchange parameters of two common mangrove species: Avicennia marina and Rhizophora stylosa. Photosynth Res 138, 249–260.

Van de Poel B et al (2016) Transcriptome Profiling of the Green Alga Spirogyra pratensis (Charophyta) Suggests an Ancestral Role for Ethylene in Cell Wall Metabolism, Photosynthesis, and Abiotic Stress Responses. Plant Physiology 172 533-546

Tian L et al. (2015) Research on the Effect of Electrical Signals on Growth of Sansevieria under Light-Emitting Diode (LED) Lighting Environment. PLoS ONE 10(6):1-18

Eisingera W. et al. (2012) Microtubules Are Essential for Guard-Cell Function in Vicia and Arabidopsis. Molecular Plant 5: 601-610