PL
Twoje zapytanie 0
Campden Vibrotom 700 smz-2
Campden Vibrotom 700 smz-2
Campden Instruments

Wibratom SMZ

Kod 7000smz-2Campden
Campden to najwyższej klasy precyzyjny, wibrujący mikrotom (w skrócie wibrotom). Jest najlepszym urządzeniem do cięcia tkanek na świecie w celu preparacji do wizualnego patch clamp (technika stabilizacji skrawka błony) lub obrazowania w wysokiej rozdzielczości. 7000smz z serii Wibracyjnych mikrotomów jest od 10 lat wybierany przez wiele laboratoriów - zakupiło go już ponad 450 laboratoriów i liczba ta wciąż rośnie!
Dowiedz się więcej o produkcie
Otrzymaj ofertę Powiadom znajomych
Zobacz inne produkty w zastosowaniach
Neuronauki Laboratorium, wyposażenie laboratorium Elektrofizjologia Izolowane organy i tkanki Patomorfologia
Cechy
  • Zawiera jednostkę kalibracji w osi z
  • Minimizer regulacji ostrza w osi z
  • Kąt uchwytu ostrza do wymagań użytkownika
  • Ustawienie pozycji start i stop od ruchu ostrza
  • Prędkości wibracji od 50 do 120 Hz
  • Amplitudy od 0,5 mm do 2,5 mm
  • Kontrolowany postęp ostrza 10 mikronów na sekundę
  • Praca ręczna lub automatyczna
  • „Auto” programowanie poprzez zapisanie pierwszego krojenia
  • Łatwo wyjmowalna do czyszczenia lodowa łaźnia wodna
  • Opcjonalne oświetlenie LED i luneta zapewniająca wyraźną obserwację

Przy użyciu mikrotomów firmy Campden opublikowano szczegółowe badania dotyczące skrawania w celu wizualnej stabilizacji skrawka tkanek neurologicznych, serca, płuc i skafoldów tkankowych. Mikrotom 7000smz-2 reprezentuje znaczący postęp z wyższą precyzją przy niższych kosztach.

Mechanizm wibracyjny mikrotomu 7000smz-2 zapewnia niespotykaną dokładność przy niemal bezgłośnej pracy. Każda maszyna przed wysyłką jest testowana przez nasze własne urządzenia pomiarowe i jest dostarczana z własnym kontrolerem kalibracji w osi z.

Wpływ nadmiernego odchylenia osi z na zdrowie i żywotność preparatu tkanki był szeroko omawiany od czasu publikacji Geigera i wsp. (2003). Urządzenie do cięcia tkanek Campden 7000smz-2, z odchyleniem od osi z na poziomie ≤ 1 µm na szeroki zakres prędkości wibracji i amplitudy, za każdym razem zapewnia zdrowe, żywotne sekcje.

Interfejs użytkownika jest łatwy i wszechstronny (bez przełącznika nożnego w przeciwieństwie do poprzednich modeli) i oferuje prostą obsługę za pomocą naciśnięcia przycisku lub szereg zmiennych parametrów dla doświadczonego użytkownika. Campden 7000smz-2 zapewnia również długoterminową wydajność, ponieważ urządzenie do cięcia zapewnia nie tylko wydajność ≤ 1 µm po wyjęciu z pudełka, ale także zaawansowany wibracyjny mechanizm nie zawierający łożysk i innych elementów podlegających zużyciu. Dzięki temu zachowa wydajność ≤ 1 µm w osi z przez wiele lat, zapewniając spójność w przygotowaniu biologicznym bez konieczności kosztownego serwisowania.

Utrzymywanie tkanki w pobliżu 4 °C musi być kontynuowane przez całą procedurę cięcia. Może to być robione za pomocą chłodzenia pasywnego, w którym do utrzymania zimna jest używana znana ilość lodu a.c.s.f. lub elektronicznie sterowaną termoelektryczną chłodziarką do kąpieli tkankowych (7610A).

Oprócz maszyny, Campden opracował ostrza mikrotomu zarówno ceramiczne, jak i ze stali nierdzewnej, tak aby aspekt szlifowania i gładzenia krawędzi ostrza był dopasowany do kąta ustawienia w dół względem tkanki. Ostrza ceramiczne mają szczególną zaletę podczas krojenia tkanki mózgowej starszej niż 30 dni. Te ceramiczne ostrza mikrotomu mają również drugą zaletę polegającą na tym, że w przeciwieństwie do ostrzy ze stali nierdzewnej nie trzeba ich wymieniać po każdej próbce tkanki.

Inne opcje obejmują zimne światło LED i lupę lub lunetę zapewniającą wyraźną obserwację podczas krojenia oraz opcjonalną komorą inkubacyjną skrawków i regulator temperatury.

Specyfikacja
  • Wielkość grubości przekroju sekcji: 0,001 mm
  • Prędkość podnoszenia i opadania stołu kąpielowego: maksymalnie 1,0 mm/s
  • Maksymalny (pionowy) przesuw stołu kąpielowego: 19 mm
  • Prędkość przesuwu głowicy tnącej:
    • Min: -4.0 mm/s (-1.00 podczas krojenia)
    • Max: +4.0 mm/s (+1.00 podczas krojenia)
  • Prędkość cofania głowicy tnącej: 4,0 mm/s
  • Maksymalny przesuw głowicy tnącej: 40 mm
  • Częstotliwość drgań ostrza:
    • Min: 50 Hz (niższe częstotliwości dostępne na zamówienie)
    • Max: 120 Hz (w zależności od amplitudy)
  • Wielkość kroku częstotliwości: 5 Hz
  • Amplituda drgań ostrza
    • Min: 0,5 mm (nominalnie)
    • Max: 2,5 mm (nominalnie)
  • Wielkość kroku amplitudy: 0,25 mm (nominalna)
  • Wymagania dotyczące zasilania (do wyboru): 115 VAC 60 Hz, 230 VAC 50 Hz
  • Moc znamionowa: 100 W
  • Moc bezpiecznika
    • 115V: T2A 250VAC
    • 230V: T2A 250VAC
  • Źródło światła: 100-240Vac 3W
  • Wymiary: 410 mm szerokość x 400 mm głębokość x 270 mm wysokość (bez źródła światła i mikroskopu)
  • Waga: 33 kg (bez mikroskopu)
  • Waga przesyłki z opakowaniem: 60 kg (bez mikroskopu)
Do pobrania
Comparison of Campden Vibrating Microtomes
Pobierz
Preparation of high quality rodent hippocampal brain slices for experimental studies of synaptic plasticity and epiletiform activity
Pobierz
Generation of precision cut-lung slices (PCLS) for ex vivo modeling of lung disease and drug testing
Pobierz
VibroTome bibliografia - referencje
Pobierz
Campden, RWD Microtomes, vibratomes, cryostats flyer EN
Pobierz
Publikacje

  • Preparation of viable adult ventricular myocardial slices from large and small mammals
    Samuel A Watson, Martina Scigliano, Ifigeneia Bardi, Raimondo Ascione, Cesare M Terracciano & Filippo Perbellini

    Nature Protocols volume 12, pages 2623-2639 (2017) - Zobacz abstrakt

  • Free-of-Acrylamide SDS-based Tissue Clearing (FASTClear) for three dimensional visualization of myocardial tissue
    Filippo Perbellini, Alan K. L. Liu, Samuel A. Watson, Ifigeneia Bardi, Stephen M. Rothery & Cesare M. Terracciano

    Scientific Reports 7, Article number: 5188 (2017) - Zobacz abstrakt

Referencje
  • Nakano, T., Nakamura, Y., Irie, K., Okano, S., Morimoto, M., Yamashita, Y., … Mishima, K. (2020). Antithrombin gamma attenuates macrophage/microglial activation and brain damage after transient focal cerebral ischemia in mice. Life Sciences, 252. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2020.117665
  • Toft-Bertelsen, T. L., Larsen, B. R., Christensen, S. K., Khandelia, H., Waagepetersen, H. S., & MacAulay, N. (2020). Clearance of activity-evoked K+ transients and associated glia cell swelling occur independently of AQP4: A study with an isoform-selective AQP4 inhibitor. GLIA. https://doi.org/10.1002/glia.23851
  • Vicente, M. C., Humphrey, C. M., Gargaglioni, L. H., & Ostrowski, T. D. (2020). Decreased excitability of locus coeruleus neurons during hypercapnia is exaggerated in the streptozotocin-model of Alzheimer’s disease. Experimental Neurology, 328. https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2020.113250
  • Vicente, M. C., Humphrey, C. M., Gargaglioni, L. H., & Ostrowski, T. D. (2020). Decreased excitability of locus coeruleus neurons during hypercapnia is exaggerated in the streptozotocin-model of Alzheimer’s disease. Experimental Neurology, 328. https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2020.113250
  • Sagoshi, S., Maejima, S., Morishita, M., Takenawa, S., Otubo, A., Takanami, K., … Ogawa, S. (2020). Detection and Characterization of Estrogen Receptor Beta Expression in the Brain with Newly Developed Transgenic Mice. Neuroscience, 438, 182–197. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2020.04.047
  • Reisinger, S. N., Bilban, M., Stojanovic, T., Derdak, S., Yang, J., Cicvaric, A., … Pollak, D. D. (2020). Lmo3 deficiency in the mouse is associated with alterations in mood-related behaviors and a depression-biased amygdala transcriptome. Psychoneuroendocrinology, 111. https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2019.104480
  • Brewer, C. L., Li, J., O’Conor, K., Serafin, E. K., & Baccei, M. L. (2020). Neonatal injury evokes persistent deficits in dynorphin inhibitory circuits within the adult mouse superficial dorsal horn. The Journal of Neuroscience, JN-RM- 0029-20. https://doi.org/10.1523/jneurosci.0029-20.2020
  • Stojanovic, T., Benes, H., Awad, A., Bormann, D., & Monje, F. J. (2020). Nicotine abolishes memory-related synaptic strengthening and promotes synaptic depression in the neurogenic dentate gyrus of miR-132/212 knockout mice. Addiction Biology. https://doi.org/10.1111/adb.12905
  • Gu, Z., Koppel, N., Kalamboglas, J., Alexandrou, G., Li, J., Craig, C., … Yoshida, Y. (2020). Semaphorin-Mediated Corticospinal Axon Elimination Depends on the Activity-Induced Bax/Bak-Caspase Pathway. The Journal of Neuroscience : The Official Journal of the Society for Neuroscience, 40(28), 5402–5412. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3190-18.2020
  • Khatami, L., Safari, V., & Motamedi, F. (2020). Temporary inactivation of interpeduncular nucleus impairs long but not short term plasticity in the perforant-path dentate gyrus synapses in rats. Behavioural Brain Research, 377. https://doi.org/10.1016/j.bbr.2019.112212
  • Genrikhs, E. E., Stelmashook, E. V., Voronkov, D. N., Novikova, S. V., Alexandrova, O. P., Fedorov, A. V., & Isaev, N. K. (2020). The single intravenous administration of methylene blue after traumatic brain injury diminishes neurological deficit, blood-brain barrier disruption and decrease in the expression of S100 protein in rats. Brain Research, 1740. https://doi.org/10.1016/j.brainres.2020.146854
  • Hart, E. E., Blair, G. J., O’Dell, T. J., Blair, H. T., & Izquierdo, A. (2019). Anterior cingulate cortex activity regulates effort- based decision making. BioRxiv, 005, 792069. https://doi.org/10.1101/792069
  • Watson, S. A., Duff, J., Bardi, I., Zabielska, M., Atanur, S. S., Jabbour, R. J., … Terracciano, C. M. (2019). Biomimetic electromechanical stimulation to maintain adult myocardial slices in vitro. Nature Communications, 10(1), 2168. https://doi.org/10.1038/s41467-019-10175-3
  • Larsen, B. R., Stoica, A., & MacAulay, N. (2019). Developmental maturation of activity-induced K + and pH transients and the associated extracellular space dynamics in the rat hippocampus. Journal of Physiology, 597(2), 583–597. https://doi.org/10.1113/JP276768
  • Sánchez-Rodríguez, I., Djebari, S., Temprano-Carazo, S., Vega-Avelaira, D., Jiménez-Herrera, R., Iborra-Lázaro, G., … Navarro-López, J. D. (2019). Hippocampal long-term synaptic depression and memory deficits induced in early amyloidopathy are prevented by enhancing G-protein-gated inwardly rectifying potassium channel activity. Journal of Neurochemistry. https://doi.org/10.1111/jnc.14946
  • Brown, A. G., Thapa, M., Hooker, J. W., & Ostrowski, T. D. (2019). Impaired chemoreflex correlates with decreased c-Fos in respiratory brainstem centers of the streptozotocin-induced Alzheimer’s disease rat model. Experimental Neurology, 311, 285–292. https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2018.10.012
  • Bartley, A. F., Abiraman, K., Stewart, L. T., Hossain, M. I., Gahan, D. M., Kamath, A. V., … Dobrunz, L. E. (2019). LSO:Ce Inorganic Scintillators Are Biocompatible With Neuronal and Circuit Function. Frontiers in Synaptic Neuroscience, 11. https://doi.org/10.3389/fnsyn.2019.00024
  • Pickford, J., Apps, R., & Bashir, Z. I. (2019). Muscarinic Receptor Modulation of the Cerebellar Interpositus Nucleus In Vitro. Neurochemical Research, 44(3), 627–635. https://doi.org/10.1007/s11064-018-2613-9
  • Li, J., & Baccei, M. L. (2019). Neonatal Injury Alters Sensory Input and Synaptic Plasticity in GABAergic Interneurons of the Adult Mouse Dorsal Horn. The Journal of Neuroscience, 39(40), 7815–7825. https://doi.org/10.1523/jneurosci.0509-19.2019
  • Schappacher, K. A., Xie, W., Zhang, J. M., & Baccei, M. L. (2019). Neonatal vincristine administration modulates intrinsic neuronal excitability in the rat dorsal root ganglion and spinal dorsal horn during adolescence. Pain, 160(3), 645–657. https://doi.org/10.1097/j.pain.0000000000001444
  • Ou, Q., Jacobson, Z., Abouleisa, R. R. E., Tang, X.-L., Hindi, S. M., Kumar, A., … Mohamed, T. M. A. (2019). Physiological Biomimetic Culture System for Pig and Human Heart Slices. Circulation Research, 125(6), 628–642. https://doi.org/10.1161/circresaha.119.314996
  • Díaz-García, C. M., Lahmann, C., Martínez-François, J. R., Li, B., Koveal, D., Nathwani, N., … Yellen, G. (2019). Quantitative in vivo imaging of neuronal glucose concentrations with a genetically encoded fluorescence lifetime sensor. Journal of Neuroscience Research, 97(8), 946–960. https://doi.org/10.1002/jnr.24433
  • Mohammed, U., Caine, R. S., Atkinson, J. A., Harrison, E. L., Wells, D., Chater, C. C., … Murchie, E. H. (2019). Rice plants overexpressing OsEPF1 show reduced stomatal density and increased root cortical aerenchyma formation. Scientific Reports, 9(1). https://doi.org/10.1038/s41598-019-41922-7
  • Galloni, A. R., Laffere, A., & Rancz, E. A. (2019). Apical length modulates dendritic excitability in L5 pyramidal neurons.
  • BioRxiv, 754499. https://doi.org/10.1101/754499
  • Morris, P. G., Mishina, M., & Jones, S. (2018). Altered Synaptic and Extrasynaptic NMDA Receptor Properties in Substantia Nigra Dopaminergic Neurons From Mice Lacking the GluN2D Subunit. Frontiers in Cellular Neuroscience, 12. https://doi.org/10.3389/fncel.2018.00354
  • Zhao, J., Baudry, M., & Jones, S. (2018). Calpain inhibition reduces NMDA receptor rundown in rat substantia nigra dopamine neurons. Neuropharmacology, 137, 221–229. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2018.05.003
  • Kammel, L. G., Wei, W., Jami, S. A., Voskuhl, R. R., & O’Dell, T. J. (2018). Enhanced GABAergic Tonic Inhibition Reduces Intrinsic Excitability of Hippocampal CA1 Pyramidal Cells in Experimental Autoimmune Encephalomyelitis. Neuroscience, 395, 89–100. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2018.11.003
  • Brewer, C. L., & Baccei, M. L. (2018). Enhanced Postsynaptic GABA B Receptor Signaling in Adult Spinal Projection Neurons after Neonatal Injury. Neuroscience, 384, 329–339. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2018.05.046
  • Kawatani, M., Yamada, Y., & Kawatani, M. (2018). Glucagon-like peptide-1 (GLP-1) action in the mouse area postrema neurons. Peptides, 107, 68–74. https://doi.org/10.1016/j.peptides.2018.07.010
  • Murakami, T., Enjoji, M., & Koyama, S. (2018). Leptin attenuates D 2 receptor-mediated inhibition of putative ventral tegmental area dopaminergic neurons. Physiological Reports, 6(7). https://doi.org/10.14814/phy2.13631
  • Ford, N. C., Ren, D., & Baccei, M. L. (2018). NALCN channels enhance the intrinsic excitability of spinal projection neurons. Pain, 159(9), 1719–1730. https://doi.org/10.1097/j.pain.0000000
  • Khodai, T., Nunn, N., Worth, A. A., Feetham, C. H., Belle, M. D. C., Piggins, H. D., & Luckman, S. M. (2018). PACAP neurons in the ventromedial hypothalamic nucleus are glucose inhibited and their selective activation induces hyperglycaemia. Frontiers in Endocrinology, 9(OCT). https://doi.org/10.3389/fendo.2018.00632
  • Saylor, D. M., Craven, B. A., Chandrasekar, V., Simon, D. D., Brown, R. P., & Sussman, E. M. (2018). Predicting patient exposure to nickel released from cardiovascular devices using multi-scale modeling. Acta Biomaterialia, 70, 304–314. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2018.01.024
  • Morris, G., Brennan, G. P., Reschke, C. R., Henshall, D. C., & Schorge, S. (2018). Spared CA1 pyramidal neuron function and hippocampal performance following antisense knockdown of microRNA-134. Epilepsia, 59(8), 1518–1526. https://doi.org/10.1111/epi.14475
  • Jiang, L., Wang, Y., Xu, Y., Ma, D., & Wang, M. (2018). The Transient Receptor Potential Ankyrin Type 1 Plays a Critical Role in Cortical Spreading Depression.  Neuroscience, 382, 23–34. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2018.04.025
  • Murakami, T., Enjoji, M., & Koyama, S. (2018). Leptin attenuates D 2 receptor-mediated inhibition of putative ventral tegmental area dopaminergic neurons. Physiological Reports, 6(7). https://doi.org/10.14814/phy2.13631
  • Romer, S. H., Seedle, K., Turner, S. M., Li, J., Baccei, M. L., & Crone, S. A. (2017). Accessory respiratory muscles enhance ventilation in ALS model mice and are activated by excitatory V2a neurons. Experimental Neurology, 287, 192–204. https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2016.05.033
  • Morris, G., Leite, M., Kullmann, D. M., Pavlov, I., Schorge, S., & Lignani, G. (2017). Cellular/Molecular Activity Clamp Provides Insights into Paradoxical Effects of the Anti-Seizure Drug Carbamazepine. Soc Neuroscience. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3697-16.2017
  • Perbellini, F., Liu, A. K. L., Watson, S. A., Bardi, I., Rothery, S. M., & Terracciano, C. M. (2017). Free-of-Acrylamide SDS- based Tissue Clearing (FASTClear) for three dimensional visualization of myoca
  • Tae, H. S., Smith, K. M., Phillips, A. M., Boyle, K. A., Li, M., Forster, I. C., … Reid, C. A. (2017). Gabapentin modulates HCN4 channel voltage-dependence. Frontiers in Pharmacology, 8(AUG). https://doi.org/10.3389/fphar.2017.00554
  • Watson, & Samuel. (2017). Preparation of viable adult ventricular myocardial slices from large and small mammals.
  • Nature.Com. https://doi.org/10.1038/nprot.2017.139
  • Kang, C., Qiao, Y., Li, G., Baechle, K., Camelliti, P., Rentschler, S., & Efimov, I. R. (2016). Human Organotypic Cultured Cardiac Slices: New Platform For High Throughput Preclinical Human Trials. Sc
  • Blot, A., de Solages, C., Ostojic, S., Szapiro, G., Hakim, V., & Léna, C. (2016). Time-invariant feed-forward inhibition of Purkinje cells in the cerebellar cortex in vivo. Journal of Physiology, 594(10), 2729–2749. https://doi.org/10.1113/JP271518
  • Hablitz, L. M., Molzof, H. E., Abrahamsson, K. E., Cooper, J. M., Prosser, R. A., Karen, X., & Gamble, L. (2015). Systems/Circuits GIRK Channels Mediate the Nonphotic Effects of Exogenous Melatonin. Soc Neuroscience. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.1597-15.2015
  • Larsen, B. R., Assentoft, M., Cotrina, M. L., Hua, S. Z., Nedergaard, M., Kaila, K., … Macaulay, N. (2014). Contributions of the Na+/K+-ATPase, NKCC1, and Kir4.1 to hippocampal K+ clearance and volume responses. GLIA, 62(4), 608–622. https://doi.org/10.1002/glia.22629
  • Schoenberger, M., Damijonaitis, A., Zhang, Z., Nagel, D., & Trauner, D. (2014). Development of a New Photochromic Ion Channel Blocker via Azologization of Fomocaine. ACS Publications, 5(7), 514–518. https://doi.org/10.1021/cn500070w
  • Yeoh, J. W., James, M. H., Graham, B. A., & Dayas, C. V. (2014). Electrophysiological characteristics of paraventricular thalamic (PVT) neurons in response to cocaine and cocaine- and amphetamine-regulated transcript (CART). Frontiers in Behavioral Neuroscience, 8(AUG). https://doi.org/10.3389/fnbeh.2014.00280
  • Delerue, F., White, M., & Ittner, L. M. (2014). Inducible, tightly regulated and non-leaky neuronal gene expression in mice. Transgenic Research, 23(2), 225–233. https://doi.org/10.1007/s11
  • Li, J., & Baccei, M. L. (2014). Neonatal tissue injury reduces the intrinsic excitability of adult mouse superficial dorsal  horn neurons. Neuroscience, 256, 392–402. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2013.10.057
  • Guilmi, M. N. Di, Wang, T., Gonzalez Inchauspe, C., Forsythe, I. D., Ferrari, M. D., Van Den Maagdenberg, A. M. J. M., … Uchitel, O. D. (2014). Neurobiology of Disease Synaptic Gain-of-Function Effects of Mutant Ca v 2.1 Channels in a Mouse Model of Familial Hemiplegic Migraine Are Due to Increased Basal [Ca 2 ] i. Soc Neuroscience. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.2526-13.2014
  • Xiong, W., Chen, S. R., He, L., Cheng, K., Zhao, Y. L., Chen, H., … Zhang, L. (2014). Presynaptic glycine receptors as a potential therapeutic target for hyperekplexia disease. Nature Neuroscience 17, 232-239. https://doi.org/10.1038/nn.3615
  • Hablitz, L. M., Molzof, H. E., Paul, J. R., Johnson, R. L., & Gamble, K. L. (2014). Suprachiasmatic nucleus function and circadian entrainment are modulated by G protein-coupled inwardly rectifying (GIRK) Channels. J. Physiol. 592.22, 5079-5092. https://doi.org/10.1113/jphysiol.2014.282079
  • Cameron, M. A., Suaning, G. J., Lovell, N. H., & Morley, J. W. (2013). Electrical Stimulation of Inner Retinal Neurons in Wild-Type and Retinally Degenerate (rd/rd) Mice. PLoS ONE, 8(7). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0068882
  • Wild, A. R., Akyol, E., Brothwell, S. L. C., Kimkool, P., Skepper, J. N., Gibb, A. J., & Jones, S. (2013). Memantine block depends on agonist presentation at the NMDA receptor in substantia nigra pars compacta dopamine neurones. Neuropharmcology 73, 138 – 146. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2013.05.013
  • Koyama, S., Kawaharada, M., Terai, H., Ohkurano, M., Mori, M., Kanamaru, S., & Hirose, S. (2013). Obesity decreases excitability of putative ventral tegmental area GABAergic neurons. Physiological Reports 1(5), 1-11 https://doi.org/10.1002/phy2.126
  • Huang, S., & Uusisaari, M. Y. (2013). Physiological temperature during brain slicing enhances the quality of acute slice preparations Frontiers Neuroscience, 7.
  • https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fncel.2013.00048/full
  • Dougherty, S. E., Reeves, J. L., Lesort, M., Detloff, P. J., & Cowell, R. M. (2013). Purkinje cell dysfunction and loss in a knock-in mouse model of Huntington Disease. Experimental Neurology, 240(1), 96–102. https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2012.11.015
  • Dougherty, S. E., Reeves, J. L., Lesort, M., Detloff, P. J., & Cowell, R. M. (2013). Purkinje cell dysfunction and loss in a knock-in mouse model of Huntington Disease. Experimental Neurology,
  • Puskarjov, M., Ahmad, F., Kaila, K., & Blaesse, P. (2012). Development/Plasticity/Repair Activity-Dependent Cleavage of the K-Cl Cotransporter KCC2 Mediated by Calcium-Activated Protease Calpain. Soc Neuroscience. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.6265-11.2012
  • Mewes, A., Franke, H., & Singer, D. (2012). Organotypic Brain Slice Cultures of Adult Transgenic P301S Mice-A Model for Tauopathy Studies. PLoS ONE, 7(9). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0045017